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色譜柱的使用說明:
(1)色譜柱使用前注意事項:
色譜柱的儲存液無特殊說明,均為評價報告所示的流動相。在使用前,一定要注意色譜柱的儲存液與要分析樣品的流動相是否互溶。在反相色譜中,如用高濃度的鹽或緩沖液作洗脫劑,應(yīng)先用10%左右的低濃度的有機(jī)相洗脫劑過渡一下,否則緩沖液中的鹽在高濃度的有機(jī)相中很容易析出,堵塞色譜柱。
(2)流動相:
流動相中所使用的各種有機(jī)溶劑要盡可能使用色譜純,配流動相的水是超純水或全玻璃器皿的雙蒸水。如果將所配得流動相再經(jīng)過0.45μm的濾膜過濾一次則更好,尤其是含鹽的流動相。另外,裝流動相的容器和色譜系統(tǒng)中的在線過濾器等裝置應(yīng)該定期清洗或更換。
以常規(guī)硅膠為基質(zhì)的鍵合相填料通常的PH值適用范圍是2.0-8.0,BDS C18適合于堿性化合物,PH值適用范圍為2.0-10.0。當(dāng)必須要在PH值適用范圍的邊界條件下使用色譜柱時,每次使用結(jié)束后立即用適合于色譜柱儲存并與所使用的流動相互溶的溶劑清洗,并*置換掉原來所使用的流動相。
(3)樣品:
樣品也要盡可能清潔,可選用樣品過濾器或樣品預(yù)處理柱(SPE)對樣品進(jìn)行預(yù)處理;若樣品不便處理,要使用保護(hù)柱。在用正相色譜法分析樣品時,所有的溶劑和樣品應(yīng)嚴(yán)格脫水。
2、色譜柱的保存
(1)反相色譜柱每天實驗后的保養(yǎng):
使用緩沖液或含鹽的流動相,實驗完成后應(yīng)用10%的甲醇/水沖洗30分鐘,洗掉色譜柱中的鹽,再用甲醇沖洗30分鐘。注意:不能用純水沖洗柱子,應(yīng)該在水中加入10%的甲醇,防止將填料沖塌陷。
(2)長期保存色譜柱:
如色譜柱要長時間保存,必須存于合適的溶劑下。對于反相柱可以儲存于純甲醇或乙腈中,正相柱可以儲存于嚴(yán)格脫水后的純正己烷中,離子交換柱可以儲存于水(含防腐劑*或柳硫汞)中,并將購買新色譜柱時附送的堵頭堵上。儲存的溫度是室溫。
3、色譜柱的再生
因為色譜柱是消耗品,隨著使用時間或進(jìn)樣次數(shù)的增加,會出現(xiàn)色譜峰高降低,峰寬加大或出現(xiàn)肩峰的現(xiàn)象,一般來說可能是柱效下降。
(1)反相柱的再生:依次采用20-30倍的色譜柱體積的甲醇:水=10:90 (V/V),乙腈,異丙醇作為流動相沖洗色譜柱,完成后再以相反順序沖洗色譜柱。
(2)正相柱的再生:依次以20-30倍色譜柱的體積的正己烷、異丙醇、二氯甲烷、甲醇作為流動相沖洗色譜柱,然后再以相反的順序沖洗色譜柱。要注意上述溶劑必須嚴(yán)格脫水。
4、色譜柱在使用過程中易出現(xiàn)的問題和解決辦法
色譜柱在使用中zui常見的問題就是柱壓升高,如果柱壓是在長時間使用過程中緩慢增加,屬于正常現(xiàn)象。但柱壓在使用過程中突然升高(系統(tǒng)管路堵塞及壓力傳感器故障除外),可能的原因有如下幾點:
(1)色譜柱頭的過濾篩板堵塞或污染;
(2)色譜柱頭的填料被樣品污染;
(3)色譜柱內(nèi)緩沖液中的鹽遇到高濃度的甲醇或其他有機(jī)溶劑,形成結(jié)晶析出;
(4)流動相PH值過大或過小使固定相結(jié)構(gòu)破壞或溶解。
解決辦法如下:
(1)如確定是色譜柱頭的過濾篩板被污染,可以將色譜柱反方向用甲醇沖洗至正常壓力,或者卸下色譜柱頭,將其放在10%的稀硝酸內(nèi)超聲清洗10分鐘,后再用純水超聲10分鐘,重新裝入色譜柱。
(2)如確定色譜柱頭的填料被污染,將柱頭螺絲卸下,挖出柱內(nèi)前段被污染的填料,用相同的柱填料重新填入,仔細(xì)修復(fù)后,重新安裝上柱頭螺絲。
(3)如確定定是鹽結(jié)晶,用10%的甲醇/水沖洗色譜柱使柱內(nèi)鹽全部溶解,再換高濃度甲醇。
(4)如果因PH值使用不當(dāng),很難恢復(fù)。
一、色譜柱的使用
反相色譜柱一般是保存在甲醇或乙腈中。使用前一定注意所使用的流動相和甲醇或乙腈能夠互溶。色譜柱在保存過程中有可能因為溶劑的揮發(fā)而干涸,所以在使用流動相分析之前應(yīng)使用10—20倍柱體積的甲醇或乙腈平衡色譜柱。如果所使用的流動相中含有緩沖鹽,則應(yīng)注意用水作為過渡,而不能直接將有機(jī)溶劑和緩沖鹽直接混合。測試結(jié)束后沖洗柱子也要注意這一點。還有一點需要注意的是不要使用純水沖洗色譜柱。對于非極性柱,比如C8和C18,由于純水不能浸潤填料表面而沖倒碳鏈,造成柱效下降。另外,分析樣品時由于純水不能浸潤填料表面形成水膜,出現(xiàn)樣品不保留而使分離度下降,重復(fù)性差,所以對于一般的C8和C18柱,有機(jī)溶劑的比例不應(yīng)低于5%。
二、色譜柱的再生
再生過程中用來沖洗色譜柱的溶劑體積可以參照下表:
再生過程及溶劑沖洗順序可參見下表:
三、色譜柱的維護(hù)
1.盡量能夠使用預(yù)柱或保護(hù)柱保護(hù)色譜柱;
2.大多數(shù)色譜柱的PH范圍是2—8,盡量不要超過范圍使用;
3.避免流動相的組成或比例急劇變化;
4.流動相使用前必須進(jìn)行過濾和脫氣處理;
5.如果使用極性或粒子性的緩沖液作流動相,實驗完畢后應(yīng)將色譜柱沖洗干凈
C18柱子清洗再生
用下列10倍柱體積的溶劑清洗:(正向沖洗時流速:0.5ml/min)
95%水:5%乙腈(或甲醇)
(去除緩沖鹽)
如系統(tǒng)沒有梯度功能中間增加5倍柱體積50%水:50%乙腈(或甲醇)沖洗步驟。
95% 乙腈(或甲醇):5%水
zui后保存在35%水:65%乙腈中(或甲醇)。
如是Phenomenex柱子可以反沖,但流速一點要控制在0.2ml/min之內(nèi)。
如還有疑問,可以發(fā)郵件給我,ydfq-0013
你問的不是C18的沖洗嗎?那個二氯甲烷是沖洗正相硅膠柱的,也就是(silica柱子的)。
一、反相柱子的再生
順次采用20-30倍的色譜柱體積的甲醇:水=10:90(V/V),已腈,異丙醇作為流動相沖洗色譜柱,完成后再以相反順序沖洗色譜柱。
液相色譜HPLC保留時間漂移的故障排除
保留時間不重現(xiàn)有兩種不同的情況:即保留時間漂移和保留時間波動。前者是指保留時間僅沿單方向發(fā)生變化,而后者指保留時間無固定規(guī)律的波動。將此兩種情況區(qū)分開來對找到問題的原因往往很有幫助。保留時間漂移的幾種zui常見的原因如下:
一 色譜柱平衡
如果我們觀察到保留時間漂移,首先應(yīng)考慮色譜柱是否已用流動相*平衡。通常平衡需要10-20個柱體積的流動相,但如果在流動相中加入少量添加劑(如離子對試劑)則需要相當(dāng)長的時間來平衡色譜柱。
流動相污染也可能是原因之一。溶于流動相中的少量污染物可能慢慢富集到色譜柱上,從而造成保留時間的漂移。應(yīng)注意:水是很容易污染的流動相成分。
二 固定相穩(wěn)定性
固定相的穩(wěn)定性都是有限的,即使在推薦的PH范圍內(nèi)使用,固定相也會慢慢水解。例如,硅膠基質(zhì)在pH4時水解穩(wěn)定性。水解速度與流動相類型和配體有關(guān)。雙官能團(tuán)配體和三官能團(tuán)配體比單官能團(tuán)配體的鍵合相要穩(wěn)定;長鏈鍵合相比短鏈鍵合相穩(wěn)定;烷基鍵合相比氰基鍵合相穩(wěn)定的多。
經(jīng)常清洗色譜柱亦會加速色譜柱固定相的水解。其他硅膠基質(zhì)鍵合相在水溶液環(huán)境中也可以發(fā)生水解,如氨基鍵合相等。
三 色譜柱污染
保留時間漂移的另一個常見原因是色譜柱污染。HPLC色譜柱是非常有效的吸附性過濾器,它可以過濾并吸附流動相攜帶的任何物質(zhì)。污染源可以是:流動相本身,流動相容器,連接管、泵、進(jìn)樣器和儀器密封墊,以及樣品等。通常通過實驗可判斷污染的來源。
樣品中如果存在色譜柱上保留很強(qiáng)的組分,就可能是使保留時間漂移的潛在根源。這些根源通常是樣品基質(zhì)。如:配藥中的賦形劑,生化樣品(如血清)中的蛋白及類脂類化合物,食品樣品中的淀粉,環(huán)境水樣中的腐殖酸等。通常樣品中的強(qiáng)保留組分具有較高的分子量,在此情況下,保留時間漂移的同時或其后會有反壓的增加??梢酝ㄟ^使用固相提取(SPE)等樣品前處理方法來去除樣品基質(zhì)的影響。
避免色譜柱污染zui簡單的方法是防患于未然。相比之下,找到問題的所在并設(shè)計有效的清洗步驟以去除污染物要困難的多。通常使用在給定色譜條件下的強(qiáng)溶劑,但并非所有污染物都可以在流動相中溶解。如THF可去除反相色譜柱中的許多污染物,但蛋白在THF中就不能溶解。DMSO常常用于去除反相色譜柱中的蛋白。
使用保護(hù)柱是個非常有效的方法。反沖色譜柱僅是不得已時采用的辦法。
四 流動相組成
流動相組成的緩慢變化也是保留時間漂移的常見原因。如流動相中易揮發(fā)組分的揮發(fā)及循環(huán)使用流動相等。
五 疏水坍塌
當(dāng)小孔徑、端基封口良好的反相填料色譜柱使用接近100%的水為流動相時,有時會發(fā)生分離突然喪失及被分析物質(zhì)保留明顯降低或*不保留的現(xiàn)象,這就是疏水坍塌。此現(xiàn)象是由流動相不浸潤固定相表面而致。挽救的辦法實現(xiàn)用含大量有機(jī)組分的流動相浸潤固定相,再用高水含量的流動相進(jìn)行平衡。由是色譜柱長期儲存也會發(fā)生此現(xiàn)象。使用內(nèi)嵌極性基團(tuán)的反相色譜柱或非端基封口的色譜柱也可避免發(fā)生坍塌
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